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    賓大開發新型基因編輯工具,可在原代細胞中實現近100%的編輯效率

    迄今,由 RNA 引導的 CRISPR-Cas 系統已經有十多年的發展歷史。期間,有許多新的技術被開發出來,并被用于生物學和醫學等領域的研究中,比如,了解疾病的遺傳基礎、通過編程逆轉疾病狀態的工程細胞治療等。


    (資料圖片僅供參考)

    在此基礎上,為了進一步落實基因組編輯技術在基礎研究、細胞工程和基因治療等領域的應用,相關領域的研究人員正在緊鑼密鼓地開發更好的方法,希望能將 CRISPR-Cas 系統更有效地遞送至原代細胞。

    雖然已經有許多種(病毒載體、電穿孔和小分子藥物等)CRISPR-Cas 系統的遞送方法,但這些方法各自都存在著局限性。

    具體來說,如果采用病毒式方法,病毒會不可避免地被整合到人的基因組,且會永遠和人類的細胞一同存在,這會導致諸多安全問題。比如,若病毒載入的位點影響人類的抑癌基因,可能導致細胞發展為癌細胞;若病毒插入的位點不適合基因的表達,會造成低效率的基因編輯。并且,這種方法對載體的大小也有限制,無法包裹那些較大的載體。

    如果采用電穿孔法,即先通過高電壓擊穿細胞膜,再將 CRISPR 的載體導入細胞中,會給細胞的活力和激活狀態造成損傷。如果采用小分子化學藥物包裹 mRNA 的方法,將載體遞送到細胞中,會造成較高的生產成本,以及在細胞水平的表達量不統一,且 mRNA 也非常不穩定。

    “要是我們能開發出一種方法,可以不用病毒、電擊、mRNA,而是只用蛋白來實現基因編輯,就極大可能彌補當前那些傳統方法存在的缺陷。”美國賓夕法尼亞大學史俊煒副教授表示。

    圖丨史俊煒(來源:史俊煒)

    基于上述設想,他和團隊設計了一套多肽輔助的純蛋白基因組編輯(Peptide-Assisted Genome Editing,PAGE)的 CRISPR-Cas 系統(以下簡稱為 CRISPR-PAGE 系統),在方便、高效、無毒性的條件下,實現了對原代細胞的基因組編輯。研究結果顯示,該系統在小鼠和人類原代 T 細胞中,能夠實現高達 98% 的編輯效率;在人類原代造血干細胞和祖細胞中,則能夠實現接近 100% 的基因編輯效率。

    圖丨CRISPR-PAGE 系統的開發(來源:Nature Biotechnology)

    值得一提的是,CRISPR-PAGE 系統由穿透細胞的 Cas 蛋白和穿透細胞的核內體逃逸肽組成,只需 30 分鐘的孵育期,就能在將細胞毒性和基因轉錄干擾降至最低的同時,實現強大的單基因組和多基因組編輯。

    那么,具體來說,單基因組和多基因組編輯究竟是如何實現的呢?

    “由于細胞膜和核膜都由脂類組成且帶負電,因此我們就想,如果能在 CRISPR 蛋白的表面修飾足夠多的正電或親脂疏水性基團,這個 CRISPR 蛋白就會直接融合且穿透細胞膜和核膜,進而實現基因編輯。并且,在該方法中,蛋白和細胞之間是共孵育的,所以要實現單基因或多基因,只用孵育不同的蛋白即可。”史俊煒解釋道。

    同時,他也強調,該方法最大的應用意義在于,CRISPR-PAGE 系統是基于細菌生產,生產成本低、狀態穩定、易于運輸,同時也容易實現基因編輯,且編輯完后不留任何痕跡,也就是原代細胞里剩下的 CRISPR 的所有系統,會在兩天之內完全清除。

    2023 年 4 月 24 日,相關論文以《利用肽輔助基因組編輯的人類和小鼠原代細胞高效工程》(Efficient engineering of human and mouse primary cells using peptide-assisted genome editing)為題在 Nature Biotechnology 上發表[1]。

    圖丨相關論文(來源:Nature Biotechnology)

    賓夕法尼亞大學博士后研究員張珍為該論文的第一作者,賓夕法尼亞大學免疫學研究所所長 E·約翰·惠里(E. John Wherry)、賓夕法尼亞大學表觀遺傳學所長雪萊·L·伯杰(Shelley L. Berger)教授和史俊煒副教授擔任論文的共同通訊作者。

    在這項研究中,該團隊主要把 CRISPR-PAGE 系統用于人類的 T 細胞和血液干細胞中。事實上,包括巨噬細胞、樹突狀細胞、自然殺傷細胞等在內的許多來自血液的細胞,都可以通過該系統實現基因編輯。

    并且,如上所述,該方法是讓帶正電或帶親脂疏水基團的 CRISPR,通過帶負電的細胞膜和核膜,遵循了基因正負電相互作用和脂類融合的原則,因此能為原代細胞的下一代基因工程,提供廣泛通用的平臺。

    此外,該方法雖然已經實現了單基因或多基因敲除,但未來的基因編輯或細胞治療方法,還要求能夠達到單點突變、多點突變或整個基因的更換。因此,該團隊后續也計劃對該方法進行進一步的升級。

    “雖然我們研究的這個方法是基于 CRISPR 的基因改造,但只要能夠找到合適的表面帶正電或具有親脂疏水性的結構,其還能用于其他大分子或基于蛋白質的治療遞送,并有助于更多潛在治療方法的開發。”史俊煒表示。

    參考資料:

    1. Zhang, Z., Baxter, A.E., Ren, D. et al. Efficient engineering of human and mouse primary cells using peptide-assisted genome editing. Nature Biotechnology (2023). https://doi.org/10.1038/s41587-023-01756-1

    責任編輯:Rex_25

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